1主題內(nèi)容與適用范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了用α-*測(cè)定小麥粉破損淀粉值的原理使用的試劑、儀器、分析
的步驟以及結(jié)果計(jì)算。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于小麥粉破損淀粉值的測(cè)定。
2方法原理
小麥粉中破損淀粉對(duì)α-*的敏感性大大高于未破損淀粉,在常溫下能被α-
*降解生成糊精和一定量的還原糖。利用此特性,在規(guī)定的條件下,用α-*
降解小麥粉中破損淀粉,再用鐵氰化鉀法測(cè)定其還原糖量,并根據(jù)法蘭德的經(jīng)驗(yàn)公式計(jì)
算小麥粉中的破損淀粉值。
3試劑
以下試劑未經(jīng)標(biāo)明的均為分析純?cè)噭疄檎麴s水。
3.1緩沖溶液
溶解4.1g無水乙酸鈉于水中,加入3mL冰乙酸,再用水稀釋至1000mL,pH值應(yīng)
為4.7±0.1。
3.2提取溶液
將20g氯化鈉及0.2g乙酸鈣溶于水中,再稀釋至1000mL。
3.3α-*液
稱取活性相當(dāng)于15000±1500A的α-*制劑溶于500mL提取液中,再加入
500mL緩沖液,α-*活性測(cè)定見附錄A(補(bǔ)充件)a-*活性測(cè)定。此溶液用
時(shí)現(xiàn)配。
3.410%(V/V)硫酸溶液。
3.512%鎢酸鈉溶液。
3.60.1M堿性鐵氰化鉀溶液
稱取32.9g干燥純凈的鐵氰化鉀與44.0g*溶于1000mL水中,貯于棕色
瓶避光保存。
3.7乙酸鹽溶液
70g氯化鉀和40g硫酸鋅溶于水中,加入200mL冰乙酸,再用水稀釋至1000mL。
3.810%*溶液。
3.91%淀粉溶液。
3.100.1M*溶液
稱取24.82g*(含5個(gè)結(jié)晶水)和3.8g四硼酸鈉溶于1000mL水中,貯
于棕色瓶避光保存,一星期后按GB5490《糧食、油料和植物油脂檢驗(yàn)一般規(guī)則》附錄
B規(guī)定方法標(biāo)定其濃度。
3.11酸洗石英砂。
4儀器和用具
4.1玻璃試管:φ25×220mm。
4.2量筒:50mL;25mL。
4.3恒溫水?。嚎煽販?0±0.1。
4.4秒表。
4.5加液器或移液管:2mL;10mL。
4.6移液管:5mL。
4.7玻璃漏斗及中速濾紙。
4.8電爐。
4.9錐形瓶:100mL。
4.10滴定管:10mL。
4.11
天平:感量0.01g;0.1mg。
4.12pH計(jì)或精密pH試紙:可測(cè)pH4.7±0.1。
5分析步驟
5.1稱樣量
一般小麥粉均假定其水分含量為14.0%,淀粉含量為68%-72%,稱樣量為1.00
0.01g。如果淀粉含量過高或過低時(shí),則稱樣量應(yīng)按式(1)計(jì)算:
70
稱樣量(g)=-----------
?。?5-p-M)
式中:P——100g試樣中蛋白質(zhì)的克數(shù)(含氮量×5.7);
M——100g試樣中水分的克數(shù)。
5.2酶解
稱取5.1規(guī)定量的試樣于玻璃試管中,加入1小勺酸洗石英砂,混勻并將試樣搖松
傾斜于試管底部,準(zhǔn)確量取46mL已預(yù)熱至30℃的α-*液,先將少許α-*液
加入試樣中并盡量搖勻,立即計(jì)時(shí),再加入其余α-*液,加蓋試管并上下顛倒搖
動(dòng)約30次使試樣均勻懸浮。迅速將試管浸入30℃水浴中,然后每隔10min取出試管,
上下顛倒搖動(dòng)10次使試樣重新均勻懸浮,恒溫酶解剛好60min時(shí),取出試管,立即加
入2mL10%硫酸溶液,充分混勻后,再加入2mL12%鎢酸鈉溶液,搖勻并放置約2min
后,用中速濾紙過濾。充去zui初幾滴,收集濾液于干凈錐形瓶中,此濾液即為試樣測(cè)定
液。
另取一支試管不加小麥粉試樣,同時(shí)同上操作,所得濾液即為空白對(duì)照液。
5.3測(cè)定還原糖
準(zhǔn)確吸取5mL試樣液于試管中,再準(zhǔn)確加入10mL0.1M堿性鐵氰化鉀溶液,混合
后將試管浸入劇烈沸騰的水中(可將試管置于鐵絲籠架放入鋁鍋煮沸的水中,每次可同
時(shí)作多個(gè)樣品的測(cè)定),繼續(xù)加熱待水再沸騰后開始計(jì)時(shí),準(zhǔn)確反應(yīng)20min后,取出試
管立即置流水冷卻。冷卻后將試管中溶液倒入錐形瓶中,并用25mL乙酸鹽溶液分三次
洗滌試管一并倒入錐形瓶?jī)?nèi),再加入10ml10%*溶液。然后用0.1M*
溶液滴定至淡黃色,再加入約1mL1%淀粉液,繼續(xù)滴定至溶液藍(lán)色消失(半分鐘內(nèi)溶
液不返藍(lán)色),記錄用去*溶液的體積為V1(mL)。
吸取空白對(duì)照液5mL代替試樣液,同上操作,記錄用去*溶液的體積為
V2(mL)。
6結(jié)果計(jì)算
6.1氧化5mL樣品液(相當(dāng)于0.1g小麥粉樣品)中還原糖所需0.1M鐵氰化鉀體積V
按式(2)計(jì)算;
c
V=(V2-V1)×---………………………………(2)
0.1
式中:V——氧化試樣液中還原糖所需的0.1M鐵氰化鉀液的體積,mL;
V1——滴定試樣液用去*的體積,mL;
V2——滴定空白液用去*的體積,mL;
c——*的摩爾濃度,M;
0.1——換算成0.1M鐵氰化鉀溶液體積的系數(shù)。
6.2小麥粉麥芽糖值的確定
根據(jù)式(2)計(jì)算所得V值在表1中用插入法查出相應(yīng)的100g小麥粉中含有麥芽糖
的克數(shù),即為該樣品的麥芽糖值L。
6.3小麥粉破損淀粉值(P)按式(3)計(jì)算:
P=(5×L-3.5)×6………………………………(3)
式中:L——小麥粉麥芽糖值。
7結(jié)果允許差
兩次測(cè)定結(jié)果之差不得超過平均值的5%,測(cè)定結(jié)果保留小數(shù)點(diǎn)后一位。
附錄A
α-*活性的測(cè)定
?。ㄑa(bǔ)充件)
A1主題內(nèi)容和適用范圍
本補(bǔ)充件規(guī)定了用比色法測(cè)定α-*活性的方法。
本補(bǔ)充件適用于各種來源的α-*制劑及谷類產(chǎn)品的α-*活性的測(cè)定。
A2方法原理
α-*能降解--限制糊精,經(jīng)過不同的反應(yīng)時(shí)間后,反應(yīng)混合物與碘的顯色
強(qiáng)度隨時(shí)間增加而降低,用測(cè)定這種顯色強(qiáng)度隨時(shí)間降低的速度來反映α-*的活
性。
A3試劑
以下試劑未經(jīng)標(biāo)明的均為分析純,水為蒸餾水。
A3.10.2%氯化鈣溶液。
A3.2碘貯備液
溶解11.0g*于少量水中,加入5.5g結(jié)晶碘,攪拌至碘*溶解,再稀釋至
250mL,置棕色瓶中貯于暗處。此液可保存一個(gè)月。
A3.3碘稀釋液
溶解40.0g*于水中,加入4.0mL碘貯備液,用水稀釋至1000mL,用時(shí)現(xiàn)配。
A3.4緩沖溶液
溶解164g無水乙酸鈉或272g三水乙酸鈉(CH3COONa·3H2O)于水中,加入120mL
冰乙酸,用水稀釋至1000mL。
A3.5可溶性淀粉。
A3.6β-*液
取10g具有酶活性的新鮮黃豆粉(粗細(xì)度為通過15mm孔篩的篩下物)于燒杯中,
加入85mL水和15mL0.05M硫酸溶液,充分?jǐn)噭?,靜置15min后,用中速濾紙過濾,該
濾液用于制備β--限制糊精。
A3.70.05M硫酸溶液。
A3.8β--限制糊精
稱取5.00g(以干態(tài)計(jì))可溶性淀粉于小燒杯中,加入約20mL水,攪拌使成懸浮
液,然后將懸浮液邊攪拌邊緩慢倒入盛有約100mL沸騰水的高型燒杯中,并用洗瓶將
小燒杯中淀粉全部轉(zhuǎn)移至高型燒杯,繼續(xù)攪拌并加熱使緩慢沸騰2min,然后用表面皿
蓋上燒杯口,取出用流水冷卻,再加入25mL緩沖溶液及50mLα-*液,在室溫下,
放置24h后,加入一匙浮石粉,在10min內(nèi)緩慢加熱至沸,保持沸騰5min后,取出流水
冷卻,zui后用水定容至250mL,搖勻、過濾,濾液中加幾滴甲苯,在25℃以下貯存5
天,此溶液的pH須在4.7±0.1。
A4儀器和用具
A4.1玻璃試管。
A4.2高型燒杯:250mL。
A4.3容量瓶:250mL;100mL。
A4.4玻璃漏斗:φ6cm。
A4.5表面皿:φ7cm。
A4.6移液管:2mL;5mL;15mL。
A4.7量筒:25mL;50mL。
A4.8加液器或移液管:10mL。
A4.9電爐:1000W。
A4.10恒溫水?。嚎煽販?0±0.1℃及20±0.5℃。
A4.11秒表。
A4.12實(shí)驗(yàn)?zāi)シ蹤C(jī)。
A4.13篩子:孔徑為1.0mm及0.8mm。
A4.14pH計(jì)或精密pH試紙:可測(cè)pH4.7±0.1
A4.15分光光度計(jì)。
A5分析步驟
A5.1α-*溶液的配制
A5.1.1酶制劑α-*液的配制
稱取α-*制劑48mg,用0.2%氯化鈣溶液溶解并稀釋至100mL。根據(jù)該溶
液酶活性的大小再用0.2%氯化鈣稀釋至適合于測(cè)定活性的溶液,稀釋后的溶液應(yīng)使
35%-60%的限制糊精在15-40min內(nèi)被降解,即zui后測(cè)得的吸光度值應(yīng)為底物校準(zhǔn)時(shí)
吸光度值的40%-65%。
A5.1.2麥芽粉及其他產(chǎn)品α-*液的配制
測(cè)定麥芽粉可稱樣100g,如測(cè)定其他產(chǎn)品,則根據(jù)酶活性的大小擬定稱樣量,均
按下述步驟提取酶液。
將預(yù)先在30℃水浴中恒溫10min以上的0.2%氯化鈣溶液100±0.5mL加入試樣中,
加塞振搖使充分混合,立即置于30℃水浴中,每隔15min取出試管,上下顛倒混合10
次,再浸入水?。ㄕ駬u次數(shù)與程度對(duì)結(jié)果有影響),恒溫提取60min后取出過濾(不要
振搖),此濾液即為酶提取液。
A5.2底物的校準(zhǔn)
A5.2.1混合5mLβ—限制糊精及15mL0.2%氯化鈣溶液于燒杯中。
A5.2.2在試管中先加入10mL稀釋碘液,再加入A5.2.1的混合液2mL,然后用適量的
水稀釋(一般稀釋水量為20-40mL之間),混合后在20℃下用1cm比色杯在波長(zhǎng)575nm
下測(cè)其吸光度。
A5.2.3調(diào)整原稀釋水量再按A5.2.2操作,反復(fù)多次直至測(cè)得的吸光度值在0.55-0.6
之間,記錄此時(shí)稀釋水量V(mL),即為該底物的校正水量。
A5.2.4在另一支已加入10mL稀釋碘液的試管中,加入2mL0.2%氯化鈣液代替混合
液,同A5.2.2操作,作為A5.2.2測(cè)定吸光度時(shí)的空白對(duì)照。
A5.3α-*活性測(cè)定
A5.3.1將待用--限制糊精預(yù)熱至30℃。
A5.3.2吸取A51稀釋后的酶液15mL于試管中,置30水浴恒溫5!10min。
A5.3.3用速流移液管吸取5mL已預(yù)熱的--限制糊精迅速加入含15mL酶液的試管中,
在加入糊精的同時(shí)立即用秒表計(jì)時(shí),然后分別在30恒溫10min和30min時(shí)吸取此混合
液,按下述操作。
A5.3.4吸取2mL上述混合液立即加入預(yù)先加入10mL稀釋碘液的試管中,再加入
A5.2.3測(cè)得的水的體積V(mL)(即校正水量),混勻后在20下恒溫,并用1cm比色
杯在波長(zhǎng)575nm下測(cè)定吸光度(如測(cè)定一系列樣品,可在所有樣品均完成顯色后再一起
測(cè)定吸光度,但zui長(zhǎng)間隔時(shí)間不得超過1h)。
A5.3.5用2mL0.2%氯化鈣溶液代替混合液,同A5.3.4操作,作為A5.3.4測(cè)定吸光
度時(shí)的空白對(duì)照。
A5.3.5用2mL0.2%氯化鈣溶液代替混合液,同A5.3.4操作,作為A5.3.4測(cè)定吸光
度時(shí)的空白對(duì)照。